1．單一固定液的性質和用途

（1）乙醇（C2H5OH）（ethylalcohol）：又名酒精，可沉淀白蛋白、球蛋白、核蛋白，后者易溶于水，所以經酒精固定的標本對細胞核染色不良。酒精可溶解脂肪、類脂體，所以不能用酒精固定脂肪。酒精可沉淀肝糖，但仍可溶解于水，因此肝糖經酒精固定后不能在低于70％酒精中保存。單獨固定使用酒精的濃度應為95—100％。無水酒精滲透力較差，并且能使組織收縮，在與醋酸、氯仿混合使用時，可增強它們的穿透力。酒精除固定作用外，還具有硬化和脫水的作用，固定后的組織可保存于70％酒精中，所以酒精在制片過程中用途很大。無水乙醇容易揮發，又容易吸收空氣中的水分，所以瓶蓋必須塞緊，為了吸去其中水分，最好在無水乙醇瓶內放入少量無水硫酸銅粉末。酒精是一種還原劑，不能與重鉻酸鉀、鋨酸等氧化劑混合使用。

（2）甲醛（HCHO）（formeldehyde）：是一種氣體，溶于水成為甲醛水溶液或稱福爾馬林，一般使用濃度為10％福爾馬林（formalin）液，其配法是取市售的甲醛液10ml與90ml蒸餾水混合即可，實際上其含量只有4％甲醛。這樣的配法已成為一般實驗室常用的慣例。

甲醛不能沉淀白蛋白及核蛋白，但能與蛋白質化合。它是一種應用廣泛，使用簡單的固定液，具有穿透力強、固定均勻、組織收縮小、硬度適當，適用于一般器官組織的固定及保存。尤其對脂肪、神經組織固定效果較好。更適于病理組織的制片及大體積標本的保存，一般組織需固定24小時以上，固定后的組織可移入50％酒精中逐步脫水。

甲醛是一種強還原劑，不能與鉻酸、重鉻酸鉀、鋨酸等氧化劑混合，因極易被氧化為甲酸。在配混合固定液時，如海利氏液等需臨用前再加入，24小時后失效。

甲醛由于長期貯存，特別是低溫氣候，容易產生多聚甲醛，即溶液中的白色沉淀，在高溫下又成為甲醛。不純的甲醛易產生甲酸，使溶液變為酸性，影響核的染色。所以在備用的福爾馬林中加入小量的醋酸鈣、碳酸鎂或大理石作為中和劑。可用下法配制10％中性甲醛溶液，pH為7.0左右：

40％甲醛100ml

蒸餾水900ml

磷酸二氫鈉（NaH2PO4·H2O）4.0g

磷酸氫二鈉（Na2HPO4）6.5g

甲醛醋酸鈣溶液：

40％甲醛10ml

醋酸鈣2g

蒸餾水加至100ml

（3）醋酸（CH3COOH）（aceticacid）：純醋酸在低溫時結成冰狀故又名冰醋酸，約在17℃時融化，能和水及乙醇混合。使用濃度為0.3—5％，它能很好地沉淀核蛋白，對染色質的固定效果很好。醋酸對染色體的保存能接近生活狀態，因此在固定染色體的固定液中幾乎都含醋酸。醋酸的穿透力很強。它能使組織膨脹，常與其他藥劑配合使用，起抑制其他固定劑對組織收縮的作用。

醋酸破壞線粒體和高爾基體，所以在線粒體和高爾基體制片及固定液中都不用醋酸。

（4）苦味酸（C6H2（NO2）3OH）（picricacid）：是一種強酸，呈黃色結晶，溶于水、乙醇、苯和二甲苯。干燥時能自燃，爆炸，所以需濕性保存。一般配成飽和水溶液備用（100ml蒸餾水加1.2g苦味酸）。

苦味酸能沉淀蛋白質，對胞質固定較好。苦味酸的穿透力很慢，能使組織強烈收縮，一般都與醋酸等藥劑配合使用。苦味酸固定的組織會出現黃色，可在低度酒精中加入少量碳酸鋰飽和水溶液，洗去黃色。如遺留少許黃色在組織中，對染色無影響。

（5）重鉻酸鉀（K2CrO7）（potassium dichromate）：呈橙紅色結晶，可溶于水，有毒，是強氧化劑，不應和乙醇混合。它穿透力強，能使蛋白質變為不溶性，能保持細胞質的結構與生活狀態相仿，并用于線粒體和高爾基復合器的固定，但需與甲醛、氯化汞等混合使用，是細胞學良好的固定劑。重鉻酸鉀固定的組織需經流水沖洗12—24小時。

（6）鉻酸（H2CrO4）（chromicacid）：為強氧化劑，是一種弱酸，呈紅色或淺褐色結晶，極易潮解，所以最好配成1％的水溶液保存。它是強烈的沉淀劑，不單獨使用。硬化程度中等。固定肝糖的效果優良，它使肝糖不溶于水。在固定線粒體和高爾基復合器的固定液中都含有鉻酸成分。

鉻酸穿透力較慢，不使組織收縮。固定后的組織需經流水沖洗12小時以上，洗去鉻酸，否則會發生沉淀，影響染色。

1．單一固定液的性質和用途

（1）乙醇（C2H5OH）（ethylalcohol）：又名酒精，可沉淀白蛋白、球蛋白、核蛋白，后者易溶于水，所以經酒精固定的標本對細胞核染色不良。酒精可溶解脂肪、類脂體，所以不能用酒精固定脂肪。酒精可沉淀肝糖，但仍可溶解于水，因此肝糖經酒精固定后不能在低于70％酒精中保存。單獨固定使用酒精的濃度應為95—100％。無水酒精滲透力較差，并且能使組織收縮，在與醋酸、氯仿混合使用時，可增強它們的穿透力。酒精除固定作用外，還具有硬化和脫水的作用，固定后的組織可保存于70％酒精中，所以酒精在制片過程中用途很大。無水乙醇容易揮發，又容易吸收空氣中的水分，所以瓶蓋必須塞緊，為了吸去其中水分，最好在無水乙醇瓶內放入少量無水硫酸銅粉末。酒精是一種還原劑，不能與重鉻酸鉀、鋨酸等氧化劑混合使用。

（2）甲醛（HCHO）（formeldehyde）：是一種氣體，溶于水成為甲醛水溶液或稱福爾馬林，一般使用濃度為10％福爾馬林（formalin）液，其配法是取市售的甲醛液10ml與90ml蒸餾水混合即可，實際上其含量只有4％甲醛。這樣的配法已成為一般實驗室常用的慣例。

甲醛不能沉淀白蛋白及核蛋白，但能與蛋白質化合。它是一種應用廣泛，使用簡單的固定液，具有穿透力強、固定均勻、組織收縮小、硬度適當，適用于一般器官組織的固定及保存。尤其對脂肪、神經組織固定效果較好。更適于病理組織的制片及大體積標本的保存，一般組織需固定24小時以上，固定后的組織可移入50％酒精中逐步脫水。

甲醛是一種強還原劑，不能與鉻酸、重鉻酸鉀、鋨酸等氧化劑混合，因極易被氧化為甲酸。在配混合固定液時，如海利氏液等需臨用前再加入，24小時后失效。

甲醛由于長期貯存，特別是低溫氣候，容易產生多聚甲醛，即溶液中的白色沉淀，在高溫下又成為甲醛。不純的甲醛易產生甲酸，使溶液變為酸性，影響核的染色。所以在備用的福爾馬林中加入小量的醋酸鈣、碳酸鎂或大理石作為中和劑。可用下法配制10％中性甲醛溶液，pH為7.0左右：

40％甲醛100ml

蒸餾水900ml

磷酸二氫鈉（NaH2PO4·H2O）4.0g

磷酸氫二鈉（Na2HPO4）6.5g

甲醛醋酸鈣溶液：

40％甲醛10ml

醋酸鈣2g

蒸餾水加至100ml

（3）醋酸（CH3COOH）（aceticacid）：純醋酸在低溫時結成冰狀故又名冰醋酸，約在17℃時融化，能和水及乙醇混合。使用濃度為0.3—5％，它能很好地沉淀核蛋白，對染色質的固定效果很好。醋酸對染色體的保存能接近生活狀態，因此在固定染色體的固定液中幾乎都含醋酸。醋酸的穿透力很強。它能使組織膨脹，常與其他藥劑配合使用，起抑制其他固定劑對組織收縮的作用。

醋酸破壞線粒體和高爾基體，所以在線粒體和高爾基體制片及固定液中都不用醋酸。

（4）苦味酸（C6H2（NO2）3OH）（picricacid）：是一種強酸，呈黃色結晶，溶于水、乙醇、苯和二甲苯。干燥時能自燃，爆炸，所以需濕性保存。一般配成飽和水溶液備用（100ml蒸餾水加1.2g苦味酸）。

苦味酸能沉淀蛋白質，對胞質固定較好。苦味酸的穿透力很慢，能使組織強烈收縮，一般都與醋酸等藥劑配合使用。苦味酸固定的組織會出現黃色，可在低度酒精中加入少量碳酸鋰飽和水溶液，洗去黃色。如遺留少許黃色在組織中，對染色無影響。

（5）重鉻酸鉀（K2CrO7）（potassium dichromate）：呈橙紅色結晶，可溶于水，有毒，是強氧化劑，不應和乙醇混合。它穿透力強，能使蛋白質變為不溶性，能保持細胞質的結構與生活狀態相仿，并用于線粒體和高爾基復合器的固定，但需與甲醛、氯化汞等混合使用，是細胞學良好的固定劑。重鉻酸鉀固定的組織需經流水沖洗12—24小時。

（6）鉻酸（H2CrO4）（chromicacid）：為強氧化劑，是一種弱酸，呈紅色或淺褐色結晶，極易潮解，所以最好配成1％的水溶液保存。它是強烈的沉淀劑，不單獨使用。硬化程度中等。固定肝糖的效果優良，它使肝糖不溶于水。在固定線粒體和高爾基復合器的固定液中都含有鉻酸成分。

鉻酸穿透力較慢，不使組織收縮。固定后的組織需經流水沖洗12小時以上，洗去鉻酸，否則會發生沉淀，影響染色。

（7）氯化汞（HgCl2）（mer cury bichloride）：又稱升汞，呈白色針狀結晶，能升華，是一種極毒的藥品，對粘膜有腐蝕作用，使用時需特別當心。

氯化汞能沉淀一切蛋白質，使蛋白質變性不溶于水，對一般染色效果很好，對固定線粒體和高爾基體的效果也很好。

氯化汞穿透力較弱，收縮力較大，所以一般與醋酸、甲醛等混合使用。經氯化汞固定的組織會產生氯化亞汞沉淀，所以組織或切片需用0.5％碘酒處理3—5分鐘，除去沉淀物，然后用2％硫代硫酸鈉水溶液去碘處理1—2分鐘。

（8）四氧化鋨（OsO4）（osmiuln tatroxide）：又名鋨酸（osmicacid）。是一種淡黃色結晶體，為強氧化劑，不可與酒精、甲醛混合，在配制使用過程中瓶皿需特別潔凈，固定濃度為1—2％水溶液。需用棕色瓶貯存于4℃冰箱內。

鋨酸是固定脂肪的最好固定劑。穿透速度很慢，能均勻固定蛋白質，能保持細胞生活時形態，不引起細胞收縮，對細胞質的保存較好，特別適用于線粒體、高爾基復合器的固定。固定后的透明處理，用苯為透明劑可得良好的切片效果。

鋨酸價格極貴，毒性高，蒸氣易損傷眼睛及粘膜，使用時應加小心。

鋨酸固定的組織切片，不易被蘇木精著色，需經過漂白處理。

Lacour漂白液的配制：

20％H2O2 10ml

80％酒精30ml

將切片置此液中漂白4—12小時，移入80％酒精、70％酒精、50％酒精中各2分鐘，蒸餾水充分洗滌后，再進行染色。

以上簡單的固定液各有優缺點，如無水酒精可固定肝糖，但不能固定脂肪，因脂肪易溶于酒精。而鋨酸能固定脂肪，氯化汞對蛋白質固定較好，冰醋酸可以固定核蛋白等，它們只是對細胞的某些成分固定較好，而不能將所有成分都保存下來。如果互相配合使用，則能取長補短，得到較好的固定效果，只有了解藥品的性質，才能清楚各固定液的性能。下面介紹幾種常用的混合固定劑。

2．混合固定液的配制和性能

（1）包音氏（Bouin’s）固定液

苦味酸飽和水溶液75ml

甲醛（40％）25ml

冰醋酸5ml

本液在使用前配制。

包音氏液為常用的良好固定劑，適用于無脊椎動物，組織學、胚胎學均可應用。滲透力迅速，固定均勻，組織收縮少。小塊組織固定2—12小時，一般組織固定12—24小時，固定后用50％酒精洗滌數次。

此液固定的組織適于蘇木精、伊紅等染色。用馬瑞氏三色染色，能得艷麗的圖像。

（2）任克氏（Zenker's）固定液

重鉻酸鉀2.5g

氯化汞6g

蒸餾水100ml

冰醋酸5ml

配制時將重鉻酸鉀、氯化汞溶于加溫的蒸餾水，冰醋酸臨用前加入。此固定液適用于細胞學、組織學的研究工作。固定時間一般需12—24小時。固定后要用流水沖洗12小時，用碘去汞。此液固定的組織適于一般染色，細胞核、細胞質染色較為清晰。

（3）海利氏（Helly's）液

重鉻酸鉀2.5g

氯化汞6g

蒸餾水100ml

40％甲醛液5ml

此固定液是將任克氏配方中的冰醋酸換成甲醛液，甲醛也在用前加入，因在加入甲醛24小時后即生成沉淀而失效。固定時間12—24小時。海利氏液為骨髓、脾、肝等造血器官的較好固定劑。此液亦可保存線粒體，染色前需用碘去汞。

（4）蘇薩氏（Susa's）[海登哈音氏（Heidenhain's）]

液：

氯化汞4.5g

氯化鈉0.5g

40％甲醛液20ml

三氯醋酸2g

冰醋酸4ml

蒸餾水80ml

將4.5g氯化汞和0.5g氯化鈉溶于80ml蒸餾水中保存。臨用前取此液20ml，加入三氯醋酸0.5g，40％甲醛5ml，冰醋酸1ml，混合使用。

此液含有三氯醋酸和氯化鈉，對較硬的組織有軟化作用，如皮膚、蛔蟲卵、昆蟲幼蟲等角質層較厚的組織，食道、胃均能適用。它具有滲透快、收縮小的優點。小塊組織固定3—5小時；大塊組織，如皮膚固定12—24小時。固定后可直接入95％酒精洗滌，勿入水或低度酒精，否則易使膠原纖維膨脹。切片在染色前，用碘去汞。

（5）卡諾氏（Carnoy's）液

純酒精60ml

氯仿30ml

冰醋酸10ml

此液穿透力強，對核固定優良，是細胞學制片常用的固定液。酒精能固定胞漿及沉淀肝糖，冰醋酸能固定染色質并防止酒精過度硬化和收縮，氯仿可增加滲透力。小白鼠的睪丸和馬蛔蟲的子宮固定需30—50分鐘，稍大一些的淋巴結、胸腺等組織，可固定1—2小時。時間太長易使組織過度硬化，不利于切片。固定后直接入95％酒精洗滌，然后脫水、透明、包埋。

（6）酒精、甲醛（簡稱A．F）液

95％酒精90ml

40％甲醛10ml

如需要可加入0.5g的醋酸鈣使其呈中性。此液有固定兼脫水的作用，用于病理快速診斷的制片，也適于肥大細胞的固定。2—3mm厚的病理組織在50℃固定40分鐘，一般室溫固定12—20小時，固定后可直接入95％酒精脫水。

總之，固定液的種類很多，用時可查閱制片方面的書籍。首先要根據實驗目的，選用固定液。但應用時必須首先了解各種混合固定液中的組成成分能否預先混合，固定后是否需要洗滌，然后再開始配制固定液。