抗體制備是免疫學研究的基礎。制備一個合適的抗體將會決定著免疫實驗的成敗。抗體制備過程涉及到很多個方面，比如免疫原如何設計、免疫過程的優(yōu)化、目的抗體篩選、抗體純化、應用鑒定等。接下來我們將會對一些關鍵的技術難點進行解答。

1. 免疫原是如何設計的？有什么原則？
解答：免疫原可以是天然蛋白也可以是重組蛋白，甚至是多肽、DNA，所以免疫原的設計主要從兩個方面考慮：免疫原分子的特點抗體應用。結合免疫原分子的特點，抗體的應用可以提供預計識別的表位類型，確定使用哪種類型的免疫原和免疫原的序列。

2. DNA免疫的原理和方法是什么？
解答：將含有編碼某種抗原基因序列的質粒載體作為免疫原，直接導入動物細胞內進行表達，誘導宿主細胞對該抗原蛋白產生免疫應答，產生針對目的蛋白的抗體，再通過雜交瘤融合或基因文庫篩選獲得單克隆抗體，或通過血清純化獲得多克隆抗體。
DNA免疫方法，目前主要有3種：肌肉注射加電轉、靜脈高壓注射法和基因槍肌肉注射。

3. 對于同一種抗原，人源的噬菌體庫篩出的抗體和人體分離的抗體有什么區(qū)別？
解答：應該說各有優(yōu)勢。人源的噬菌體庫篩選出的抗體，在一些情況下，可能會產生一些非天然存在的抗體，重鏈和輕鏈的配比不一定是天然的。從人體B細胞獲得的抗體，是直接分離和測序篩選的，抗體的重輕鏈處于天然狀態(tài)。當然，我們也不能說噬菌題庫篩選的抗體就不好，因為一般更多的是評價它的親和力和免疫應用，以及后續(xù)的生產表達及結構等，需要綜合評價。

4. 噬菌體展示淘洗固相篩選和液相篩選效果有差異嗎？
解答：結合遠慕生物多年的抗體篩選經(jīng)驗，一般會首選固相淘選，因為這種方法比較簡單，不需要使用生物素標記。如果這種篩選方法沒有篩選到我們感興趣的抗體的話，我們也會過渡到液相篩選的方法。

5. 噬菌體淘洗怎么保證庫的多樣性？篩選上有什么注意的原則？
解答：淘洗過程中很多因素都會影響多樣性的結果，比如方法的選擇、固相、液相等。其次pH值是淘洗中一個重要參數(shù)。還有就是淘洗的力度和洗脫的時間也對多樣性結果有很重要的影響。需要多個方面進行試驗條件的優(yōu)化。

6. 應用于IHC的單抗開發(fā)，在抗原設計上，有什么側重點？
解答：因為IHC的實驗過程涉及到了對它本身抗原的一個變性的過程，或者說是天然細胞里面靶點的變性過程。所以在設計的時候，我們會傾向于設計成一個線性的表位，所以一般來說我們傾向于使用多肽這種免疫原的方式，來進行免疫組化抗體的開發(fā)。

7. 噬菌體展示與雜交瘤制備抗體比較，哪種更好？
解答：這個可能更多是考慮噬菌體展示和雜交瘤的優(yōu)缺點。首先從周期上來說的話，相對來說，噬菌體的方式時間更短一些，另外從篩選上來說的話，噬菌體展示的方法比較穩(wěn)定，而且比較簡單一些，操作上具有優(yōu)勢。但是雜交瘤的方法，畢竟是從一種類似于細胞內部產生抗體的方式，所以在某些方面的話，它產生的抗體更多的是天然的重鏈與輕鏈的配比，這一點，在噬菌體上不能做到百分之百。

8. 人源化抗體的制備噬菌體展示和轉基因小鼠平臺的優(yōu)勢比較？
解答：噬菌體展示技術具有周期短、準確、不受氨基酸位點限制等特點，能夠通過多種淘洗和檢測方式對不同表位進行篩選，生產成本相對低廉。不足之處在于受到庫容、表達偏好性和展示效率的影響，抗體多樣性會存在一定程度的限制，同時通過表面重塑等方法對提高人源化抗體親和力的成功率并不穩(wěn)定。

轉基因小鼠制備的全人源抗體，不僅大大減少了潛在的免疫原性，而且由于抗體是在體內產生，經(jīng)歷了正常的裝配和成熟過程，從而保證抗體具有較高的靶親和力。大部分轉基因小鼠獲得的單克隆抗體親合力在0.1-10nM之間，也有些轉基因小鼠單抗能達到皮摩爾級或者次皮摩爾級。但其不足之處在于前期研發(fā)投入的周期長，成本高。而且也由于抗體是在小鼠體內裝配，因而產生的單抗具有鼠糖基化模式，使得這些單抗最終不是全人源化模式。

9. 抗體如何進行長期保存，并保持效價的穩(wěn)定？
解答：一般情況下，抗體屬于比較穩(wěn)定的蛋白。所以多數(shù)情況下，廠家會推薦-20℃~-80℃長期保存即可，為了避免反復凍融盡量分裝后保存。此外，也可以通過加甘油避免反復凍融。當抗體濃度低時加BSA減少抗體吸附起穩(wěn)定劑的作用。對于一些少數(shù)抗體，需要通過優(yōu)化篩選緩沖液已達到保持抗體穩(wěn)定的效果，優(yōu)化包括鹽濃度、pH、緩沖體系等。