養細胞是一件戳心戳肺的事情，你要像照顧小孩一樣仔細對待，愛護她，呵護她。如果你照顧的時候能注意這些問題，會讓你的細胞養的更好。 下面就將養細胞的注意事項跟大家交流一下。

    細胞培養前的準備

    在您帶上手套開始細胞培養之前,先檢查一下移液管和瓶子的數量是否充足,以免在開始實驗后再次出入操作臺，這樣可以降低細胞污染的風險。

    細胞培養基也應先預熱,選擇只預熱部分培養基而非整瓶加熱,不但可以節約實驗時間,而且可以避免因反復加熱培養基而造成的蛋白質降解。

    結束操作后,別忘了培養基對光敏感,應盡可能避光保存。

    細胞培養的定期檢查

    定期檢查培養細胞的形態，即形狀和外觀，對于細胞培養實驗取得成功至關重要。

    除確認細胞的健康狀態外，每次操作細胞時通過肉眼和顯微鏡檢查細胞還可早期發現污染征象，避免污染擴散至實驗室其他細胞。

    細胞變質的征象

    細胞變質的征象包括核周出現顆粒、細胞與基質解離以及細胞質空泡形成。

    這些變質征象可能為多種原因所致，例如：

    培養物污染、細胞系衰老或培養基中存在毒性物質，或者這些征象僅表明培養物需要更換培養基。

    變質嚴重時將會成為不可逆的變化。

    細胞培養通風櫥的消毒及布局

    保持細胞培養通風櫥內的整潔有序，將所有物品置于直視范圍內。

    向放入通風櫥內的所有物品噴灑70%乙醇，擦拭清潔進行消毒。

    在通風櫥中部開闊處放置細胞培養容器；移液器置于右前方易于取用；試劑和培養基置于右后方便于吸??；試管架置于中后部；小型容器置于左后部用于盛放廢液。

    培養瓶/皿等物品的無菌操作

    無菌培養瓶、試劑瓶、培養皿等物品使用時方可揭開蓋子，不得將其開放暴露于環境中，操作完成后盡快蓋上蓋子，取下蓋子時應將蓋子開口朝下放在工作臺面上。

    進行無菌操作時不要說話、唱歌或吹口哨。盡快完成實驗，以盡量避免污染。

    細胞培養中可能的污染物

    細胞培養污染物主要分為兩類：

    化學污染物,如培養基、血清和水中的雜質、內毒素、增塑劑和去污劑。

    生物污染物，如細菌、霉菌、酵母、病毒、支原體以及其他細胞系的交叉污染。

    可通過充分了解污染源以及采用良好的無菌技術，降低污染發生的頻率和嚴重程度。

    交叉污染的確認

    交叉污染雖不如微生物污染普遍，但與HELA細胞及其他生長迅速的細胞系間廣泛的交叉污染是個明確的問題，會造成嚴重后果。

    從聲譽好的細胞庫獲取細胞系、定期檢查細胞系性質及采用良好的無菌技術有助于避免交叉污染。

    通過DNA指紋圖譜、核型分析和同位素分析可確認有無交叉污染。

    細胞換液注意事項

    為細胞換液時，要沿著培養瓶的一側輕輕地加入，而不是直接加到細胞中，以免損傷細胞，當培養的細胞株較為脆弱時尤其需要注意。

    使用無菌玻璃吸管或一次性塑料吸管和移液器操作液體時，每支吸管只能使用一次，以免交叉污染。

    細胞傳代的時間把握

    當細胞呈指數增殖，貼壁培養的細胞已占據所有可用基質、沒有擴增空間，或懸浮培養的細胞已超過培養基質所支撐的能力，無法進一步生長時，細胞增殖速度將大大降低甚至完全停止。

    為了將細胞密度維持在最佳水平，以便細胞繼續生長，并且刺激進一步增殖，必須對細胞進行傳代。

    細胞培養中使用抗生素的注意事項

    細胞培養時不應長期使用抗生素，因為連續使用抗生素會促進抗生素耐藥性細胞株的產生，導致輕度污染持續存在。

    抗生素只能作為對付污染的最后手段短期使用，并盡快撤除。

    如果長期使用抗生素，則應同時進行無抗生素培養，以便作為鑒別隱性感染的對照。

    細胞凍存的必要性

    連續培養的細胞系容易發生遺傳漂變，有限細胞系最終會發生衰老，所有培養的細胞都易受到微生物污染，即使運轉情況最好的實驗室也會遇到設備故障的問題。

    由于已建立的細胞系是一種寶貴資源，更換細胞系成本高昂，而且耗費時間，因此，必須將其冷凍起來，長期保存。

    細胞凍存的事項

    應在細胞濃度高的情況下進行細胞培養凍存，并且細胞傳代的次數盡可能少。

    在凍存前確保活細胞的百分比至少為90%。

    請注意，最佳凍存條件取決于所用細胞系。

    凍存和復蘇過程對大多數細胞都會造成不利影響，因此不要通過渦旋震蕩或者用力敲打培養瓶的方法使細胞脫落（培養昆蟲細胞時除外），也不要高速離心細胞。

    凍存培養基的選擇

    凍存細胞時必須選擇凍存培養基， 凍存培養基中應含有DMSO或者甘油等冷凍保護劑。

    還可使用專門配制的完全凍存培養基，例如HyClone、Gibco的細胞凍存培養基。

    細胞培養溫度的設定

    細胞培養的最佳溫度主要取決于細胞供體的體溫，此外也受到解刨部位體溫差異的影響，例如：皮膚溫度低于骨骼肌的溫度。

    與溫度過低相比，細胞培養時溫度過高時更為嚴重的問題：因此，往往將培養箱的溫度設定為略低于最佳溫度。

    各類細胞培養的最佳溫度

    大多數人和哺乳動物細胞系在36℃~37℃ 下具有最佳生長狀態。

    昆蟲細胞在27℃具有最佳生長狀態；在低于27℃以及27至30℃范圍內，細胞生長較慢。

    溫度超過30℃時，昆蟲細胞活力降低，即使溫度降至27℃，細胞活力也無法恢復。

    禽類細胞系在38.5℃時具有最佳生長狀態。雖然此類細胞也可在37℃下培養，但其生長速度會變慢。

    來源于冷血動物（例如：兩棲動物、冷水魚）的細胞系可耐受很寬的溫度范圍，為15-26℃。

    請注意每種細胞的培養條件均有所不同，偏離某種細胞所需的培養條件會導致細胞表型異常，甚至培養完全失敗。

    因此，我們建議您應熟悉自己使用的細胞系，實驗中嚴格遵守所有產品附帶的操作說明。

    細胞培養的最適pH

    大多數正常的哺乳動物細胞系都能在pH值為7.4的環境中生長良好，而且不同細胞株間差異極小。

    但是，目前發現有些轉化細胞系在輕度偏酸性的環境中即pH7.0-7.4時生長較好，而有些正常的成纖維細胞系更適合輕度偏堿性的環境即pH為7.4-7.7。

    Sf9和Sf21等昆蟲細胞系最適合在pH值為6.2的環境中生長。

    細胞培養基最適pH的控制

    細胞培養基可控制培養體系的pH值，為培養的細胞緩沖pH值的變化。

    這種緩沖作用通常是通過添加有機緩沖鹽（例如：HEPES）或者二氧化碳-碳酸氫鹽緩沖鹽實現。

    由于培養基的pH值取決于溶解態二氧化碳與碳酸氫鹽間的精密平衡，因此空氣中二氧化碳含量的變化會改變培養基的pH值。

    為此，使用二氧化碳-碳酸氫鹽緩沖鹽培養基時必須使用外源性二氧化碳，特別是使用開放式培養皿培養細胞或者進行高濃度的轉化細胞系培養時。

    細胞培養中血清的保存

    細胞培養中所用的血清不盡相同， 您需要根據您所培養的細胞種類和培養要求來挑選出最適合的血清。

    我們建議將血清保存在-10至-20℃，若存放于4℃，請勿超過一個月。

    若您無法一次用完一瓶，建議您將血清無菌分裝至合適體積的滅菌容器內，再放回冷凍箱保存。

    解凍血清時，建議您將血清從冷凍箱取出后，先置于2-8℃冰箱過夜融解，然后在室溫下使之全融。需要注意的是，融解過程中必須規則地搖晃均勻。

    如何在細胞鋪板時避免“邊緣效應”

    細胞實驗鋪板時，為避免“邊緣效應”，以應用96孔板的中間60孔為最佳，一般四周的一圈邊緣孔不養細胞，只做空白或陰性對照。

    鋪板時，細胞懸液一定要混勻，以避免細胞沉淀下來而導致每孔中的細胞數量不等，可以每接幾個就再混勻一下。

    加樣器操作要熟練，盡量避免人為誤差。 此外，吹散次數過多也會影響細胞活力。所以要熟練操作，盡快上板。

    何時選擇使用熱滅活血清

    加熱血清可以滅活補體系統。

    啟動的補體參與溶解細胞事件，刺激平滑肌收縮，細胞和血小板釋放組胺，啟動淋巴細胞和巨噬細胞活化。

    在免疫學研究、培養ES細胞、昆蟲細胞和平滑肌細胞時，推薦使用熱滅活血清。

    熱滅活血清可能出現的現象

    在免疫學研究、培養ES細胞、昆蟲細胞和平滑肌細胞時，推薦使用熱滅活血清。

    而對于其他大多數的細胞來說是不需要熱滅活血清的。

    熱滅活血清對細胞的生長只有微小的促進，或完全沒有任何作用，甚至可能因為高溫處理影響了血清的質量，而造成細胞生長速率的降低；經過熱處理的血清，沉淀物會顯著地增多，這些沉淀物在倒置顯微鏡下觀察，像是“小黑點”，常常會讓研究者誤以為是血清遭受污染，而把血清放在37度環境中，又會使此沉淀物增多，使研究者誤認為是微生物的分裂擴增。

    您可以根據您的研究需要選擇是否需要熱滅活血清。

    如此一來，不但能確保血清的質量，而且能夠節省您寶貴的時間。

    如何正確熱滅活血清

    熱滅活時請將血清置于56℃水浴30分鐘。

    為盡量減少熱滅活對血清品質的影響，一次滅活的血清體積不宜過大。

    最好準備同樣的容器裝相等體積的水（與血清相同溫度），滅活時將裝有血清和水的容器同時放入56℃水浴，在裝水的容器中放置溫度計，加熱過程中不時地輕輕旋轉混勻血清，當溫度計顯示達到56℃左右，開始計時。