常見瓊脂糖凝膠電泳錯誤

1. 使用水代替凝膠緩沖液或電泳緩沖液
瓊脂糖凝膠配制和電泳通常使用TAE或TBE緩沖液進行。 如果您使用水進行凝膠配制和跑電泳，您的凝膠將在電泳時很快融化。 TAE、TBE和水都是透明的溶液；因此，在配制時請檢查容器的標簽。

2. 使用了錯誤濃度的瓊脂糖
DNA凝膠電泳所需的標準瓊脂糖濃度為1.0%。濃度越高，小條帶的分辨率越高；反之，瓊脂糖濃度越低，大分子量條帶的分辨率和分離程度越高。 如果使用了錯誤濃度的瓊脂糖凝膠，就很難確定DNA條帶的可靠性。 當使用低百分比濃度瓊脂糖凝膠時要小心；它們往往較軟，更容易破損。

3. 顛倒了電泳槽與電源連接線的方向
這是很容易犯的錯誤，但是如果你不小心顛倒了電泳槽與電源連接線的方向，結果將會非常令人沮喪。 因為樣本會向相反方向移動，而且由于上樣孔與凝膠的末端很近，您會丟失所有的樣本。 開始您的電泳后確保DNA樣本以正確的方向進入凝膠；如果您看到您的條帶向錯誤的方向移動，請顛倒電源線的方向。

瓊脂糖凝膠中實現更高分辨率的5種方法

1. 什么是適合于您的瓊脂糖凝膠電泳的正確緩沖液？

進行DNA瓊脂糖凝膠電泳所需的緩沖液類型，主要取決于DNA片段大小和電泳后的應用。 進行瓊脂糖凝膠電泳最常見的兩種緩沖液是Tris-乙酸EDTA緩沖液（TAE）和Tris-硼酸EDTA緩沖液（TBE）。 因為兩種緩沖液的pH值都接近中性，所以緩沖液中的DNA都帶凈負電荷并向凝膠裝置正極(+)方向移動。

對于小片段DNA (<1000 bp)，如果沒有計劃從凝膠中回收DNA，那么推薦使用1x TBE緩沖液。 TBE溶液具有高離子強度和緩沖能力。 TAE緩沖液，結合低電場強度（1–2 V/cm），最適于分離大DNA（12–15 kb）。 TAE緩沖液與瓊脂糖相互作用，相比較TBE緩沖液中的瓊脂糖凝膠，會產生更低的電滲透，更大的表面孔經，和更低的電場強度，可降低大DNA的smear現象。

2. 為了獲得最好的分辨率您需要的DNA上樣量是多少？

DNA樣本量可以是各種各樣的，關鍵是您正在分離的DNA條帶的DNA含量。 最小可能被檢測的DNA的量依賴于所使用的染色方法（例如，使用SYBR Safe DNA凝膠染色可以檢測出 3 ng的DNA。 一個清晰且界限分明的條帶中DNA最大量為100 ng。

3. 凝膠配制如何影響條帶分辨率？

推薦的瓊脂糖凝膠厚度為3-4 mm；厚度超過5mm的凝膠會產生模糊的條帶和更高的染色背景。與此類似，覆蓋在電泳裝置中凝膠上的電泳緩沖液厚度為3-5mm。 緩沖液太多會降低DNA遷移率并造成條帶變形。

梳齒的厚度也很重要，它會顯著影響分辨率。 薄梳(1 mm)會給出界限清晰的條帶，而厚梳會產生厚條帶，導致分辨率降低。 梳齒應充分清洗以去掉可能的殘留物，否則可能會在泳道內產生波浪線。 此外，在去除梳齒前要先加入緩沖液，以減少瓊脂糖孔附近的撕裂。

4. 凝膠類型影響條帶分辨率嗎？

根據DNA的應用和大小，瓊脂糖類型會影響DNA分辨率。 凝膠強度，凝膠融解溫度，和電滲透是選擇合適瓊脂糖時的重要因素。

5. 您如何選擇瓊脂糖凝膠電泳運行環境？

推薦的凝膠電泳裝置內的電壓是4–10 V/cm（正極和負極之間的距離，不是凝膠長度）。 如果電壓太低，遷移率會降低，而且條帶會因擴散而變寬。 如果電壓太高，條帶分辨率會降低，這主要是由于凝膠過熱引起的。