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正確認識支原體污染以及檢測與防治

2022-11-02 10:27 作者:洛辰 來源:上海遠慕生物試劑
一.什么是支原體污染

支原體是一種大小僅為0.2~0.3 um,無細胞壁,可透過一般過濾膜(0.22-0.45 um)的原核生物,在細胞培養(yǎng)過程中,支原體感染發(fā)生率達到63%,因而細胞培養(yǎng)過程中被支原體污染是一個世界性的難題。當(dāng)細胞(特別是傳代細胞)被支原體污染后,細胞內(nèi)的DNA、RNA及蛋白表達發(fā)生改變,而細胞的生長率一般并未發(fā)生顯著的影響,因而細胞被支原體污染一般難以察覺。

二.支原體污染從哪來

細胞培養(yǎng)中有幾種支原體污染與人、牛和豬有關(guān)。實驗室的工作人員是口腔支原體、發(fā)酵支原體和人型支原體的主要來源。這三種支原體占細胞培養(yǎng)中支原體污染的一半以上,它們主要存在于人的口咽部。精氨酸支原體和無膽甾原體是另兩類細胞培養(yǎng)中的支原體,它們來自胎牛血清和新生牛血清。胰酶如果是豬來源的,那么也可能存在豬鼻支原體。

在超凈臺中,用胰蛋白酶消化該污染的細胞后發(fā)現(xiàn),活的支原體可從細胞培養(yǎng)瓶外的細胞計數(shù)板、移液器、廢棄盤中被技術(shù)員分離出來。即使過了四至六天,活的支原體仍然可以存在于超凈臺表面,可被成功恢復(fù)。在超凈臺里,傳代完被支原體污染的細胞后,再傳代干凈的不含支原體的細胞,結(jié)果仍然在6周后被檢測出支原體陽性。這些結(jié)果表明,支原體的傳播是多么的快速和容易!它也警告我們,要最大限度的避免支原體的污染,因為一瓶細胞發(fā)生污染,就會帶來支原體傳播的可能。

不恰當(dāng)?shù)南緦?dǎo)致污染的另一個原因。高壓鍋或干熱烤箱中堆積太多的物品造成加熱不均,使一小部分耗材未得到消毒。滅菌循環(huán)時間過短是另一個消毒上犯的錯誤,特別是對于超過500ml的液體,或者是包含固體成分的溶液,或膠體物質(zhì)如瓊脂、淀粉等。為了實現(xiàn)無菌,滅菌材料的尺寸、質(zhì)量、性質(zhì)和體積必須始終考慮。

三.支原體污染怎么測

1.相差顯微境檢測:

將細胞按種于事先放置于培養(yǎng)瓶內(nèi)的蓋玻片上,24h后取出,用相差油鏡觀察。支原體呈暗色微小顆粒位于細胞表面和細胞之間;

2.熒光染色法:

熒光染色用能與DNA特異性結(jié)合的熒光染料Hoechst 33258,可使支原體內(nèi)含有的DNA著色,染色后用熒光顯微鏡觀察。具體方法如下:首先將細胞接種蓋玻片上,在細胞未長滿前取出玻片,用不合酚紅的Hanks液漂洗一下,用l: 3醋酸甲酵固定10Min,然后用生理鹽水漂洗。置于用生理鹽水配濃度為50pg/ml的Hoechst 33258中染色10min。染色后用蒸溜水洗1—2min。向細胞面滴加pH5.5磷酸緩沖液數(shù)滴,然后置熒光顯微鏡下觀察。鏡下支原體為散在于細胞同圍或附于細胞膜表面的亮綠色小點;

3.電鏡檢查:

用掃描電鏡方法簡便快速,也可以利用透射電鏡;

4.DNA分子條文檢查或支原體培養(yǎng)等方法:

檢出率高。但方法較為復(fù)雜;

5.PCR檢測支原體污染:

PCR作為一種快速、靈敏、特異且簡便的基因診斷技術(shù)已應(yīng)用于科學(xué)研究和疾病的診斷。根據(jù)支原體基因組內(nèi)的保守序列設(shè)計特異引物,對待檢樣品的核酸進行擴增,通過對擴增產(chǎn)物的大小分析作出診斷。PCR檢測技術(shù)用于支原體污染的檢測,周期短、靈敏度高、特異性好、操作簡單且一次可檢測大量樣品。

四.支原體污染怎么防

1.收到新細胞進行支原體檢測,將支原體檢測陽性的細胞與其他細胞分開處理和培養(yǎng);

2.在細胞培養(yǎng)過程中,要保證環(huán)境的干凈,無菌。對生物安全柜,細胞培養(yǎng)箱定期消毒。實驗器材照紫外,用75%酒精擦拭。實驗耗材進行高壓滅菌;

3.實驗過程中需要的培養(yǎng)基,血清在使用前進行支原體檢測;

4.實驗室要定期打掃,每次使用細胞間要提前打開紫外線燈照射半小時以上。

五.支原體污染怎么治

對于非重要的細胞,如培養(yǎng)中的細胞、WCB的細胞等,將培養(yǎng)物與用過的培養(yǎng)基滅活后丟棄即可。對于較為重要的細胞,如來源珍貴或?qū)嶒炇抑屑毎2亓枯^小等可以采用以下的方法。

1.用MRA處理:用支原體清除劑(Mycoplasma Removal Agent)處理細胞,作用濃度為 25μg/ml,兩周可以清除支原體。

2.用清洗純化法清除支原體污染的方法:細胞營養(yǎng)馴化→優(yōu)質(zhì)細胞群的篩選→細胞清洗→反復(fù)離心洗滌,其原理是利用離心力、細胞、微生物質(zhì)量和懸液的浮力差達到清除支原體的目的。由于支原體個體小且除發(fā)酵支原體外多為細胞外寄生,所以通過反復(fù)洗滌細胞和低速離心換液使其中潛在的支原體數(shù)量降低至極限. 如結(jié)合敏感抗生素的抑殺作用,可達到更好的效果。

3.藥物輔助加溫處理:先用藥物處理后,再將污染的組織培養(yǎng)物放在41℃培養(yǎng)18小時,可殺死支原體,但對細胞有不良影響。

4.使用支原體清除培養(yǎng)基,每2-3天更換1次新鮮培養(yǎng)液,換液時用無菌的平衡鹽溶液洗滌細胞1-2次;期間如果細胞密度過大,請保持細胞密度適當(dāng)(貼壁細胞可能需要用胰酶消化),并更換新的培養(yǎng)器皿,3天之后,即可見明顯清除效果;處理15天后,可以用支原體檢測試劑盒進行檢測,檢測支原體是否殺滅完全;如果仍有支原體殘留,可以考慮再處理6天;為避免細胞再次受到“支原體”的污染,以后每隔1個月進行支原體的常規(guī)檢測,以保證沒有新的支原體污染。
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