工業包括生物藥生產、CAR-T、干細胞治療、疫苗生產等，需要對主細胞庫、病毒收獲液、體外擴增的細胞等進行支原體檢查。該檢查的方法依據中國藥典。科研檢支原體則需要保證細胞中沒有支原體污染，沒有詳細的方法規定。那么，工業和科研檢支原體還有哪些區別呢？

1. 方法上：

工業可使用培養法、指示細胞培養法和NAT法（核酸擴增技術）。NAT法最常見的就是PCR和熒光定量PCR。只限定了這三種。NAT在方法驗證后，可以替代前面兩種方法。它尤其適合CAR-T等的放行檢測。

科研則可采用各種方法，但一般不采用培養法，因為太慢。科研檢支原體常見方法有PCR法、qPCR法、酶熒光法、恒溫擴增法、DNA染色法、細胞感應法等。

2. 用途上：

工業檢支原體用于過程控制、放行檢測。生產前和生產后的成品都需要檢。

科研檢支原體是避免支原體污染細胞，干擾實驗，一般是一周就要監測一次。

3. 支原體污染程度：

工業上支原體污染風險主要是存在于細胞和成品中。但環境也需注意，需要定期清潔。

科研上支原體污染風險主要是存在于細胞中，但環境也需注意，需要定期清潔。

工業上，支原體在細胞和成品中如果發生污染，也是含量較低，因而需要方法的靈敏度高，通常要求檢測限達到10CFU/ml。

科研上，支原體如果污染細胞上清，則因為培養液中含有血清，因而繁殖較快，支原體的污染程度較高，通常每ml能達到10的3次方。因而對方法的靈敏度要求不高，而更看重方便。

目前，市面上大量存在各種品牌的支原體檢測產品，以NAT（PCR或qPCR）方法而論，科研和工業領域可考慮德國Minerva Biolabs產品，因其產品大多為凍干粉型，穩定性好，4度即可保存。而且操作較為方便，例如對于科研來說，PCR有預分裝型，不用自己再分液，擴增后直接上膠。更重要的是試劑盒靈敏度高，覆蓋支原體物種廣（100多種）。對于工業來說，qEP和Classic試劑盒還經過全面的方法驗證，適合放行檢測。