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JM109感受態細胞操作步驟

2021-12-06 14:48 作者:洛辰 來源:上海遠慕生物試劑
產品儲存
1.感受態細胞必須用干冰運輸,融化后的感受態細胞不能再凍結儲存。如果用戶收到感受態細胞后發現泡沫箱中的干冰已經揮發殆盡,應予以拒收。
2.收到感受態細胞后應立即儲存在-70℃以下的冰箱中,在6個月內使用不影響轉化效率;感受態細胞不可反復凍融,不要與限制性內切酶等經常使用的分子生物學試劑放在一起,避免因溫度的波動而影響的效率。

JM109菌株介紹
基因型:recA1,endA1,gyrA96,thi-1,hsdR17,supE44,relA1,Δ(lac-proAB)/F’[traD36,proAB ,lacIq,lacZΔM15]。 特 點: 本菌株在使用pUC系列質粒載體進行DNA轉化或用M13 phage載體進行轉染時,由于載體DNA產生的LacZa多肽和JM09編碼的LacZΔM15進行α-互補,從而顯示β-半乳糖苷酶活性,由此很容易鑒別重組體菌株。

質量標準    
1. 使用1 ng pUC19 Plasmid質粒DNA轉化100 ?l Competent Cells DH5α測試,產生的菌落數 >1×108 transformants/1?g pUC19 Plasmid 。            
2. β-半乳糖苷酶、α-互補性的確認:對E.coli Competent Cells JM109使用pUC19 DNA進行轉化后,在含有100 ?g/ml的Ampicillin、40?g/ml的X-Gal的L-瓊脂平板培養基上,產生藍色菌落。
3. 100 ?l的E.coli Competent Cells JM109在含有 100 ?g/ml Ampicillin的L-瓊脂平板培養基上過夜培養40 hr不產生菌落。

用戶需自備的試劑與物品
1. 試劑:LB液體與固體培養基、抗生素。
2. 物品:彎頭玻棒鋪菌器、碎冰、水浴鍋、超凈工作臺、搖床、移液器與無菌槍頭、無菌1.5ml離心管、臺式小量離心機(可配1.5ml離心管和2ml離心管的轉子)。
3. 篩選藍白斑所需:X-gal、IPTG。

使用前準備
1. 感受態細胞從-80℃取出立即置于冰上凍融,將水浴鍋溫度設置為42℃或將相應抗生素平板溫育至37℃。
2. 相應抗生素溶液、24mg/ml的IPTG溶液及20mg/ml的X-gal溶液。注意20mg/ml的X-gal溶液要避光保存。

常規操作
1.從-70℃冰箱中取出感受態細胞置于冰上融化,如需分裝可將剛融化的細胞懸 液分裝到無菌預冷的離心管中,再置于冰浴中。
 一次轉化感受態細胞的建議用量為 50-100 μl,可以根據實際情況分裝使用。應注意所用 DNA 體積不要超過感受態細胞懸液體積的十分之一。以下實驗以100ul感受態細胞為例。
2.向感受態細胞懸液中加入目的DNA(1-10 ng,且體積<10 ?l),輕輕旋轉離 心管以混勻內容物,冰浴30分鐘。
轉化效率與外源DNA的濃度在一定范圍內成正比,但當加入的外源DNA量過多或體積過大時反而會降低轉化效率。轉化時DNA體積要小于感受態細胞體積的十分之一。  
3. 將離心管置于42℃水浴中90秒,迅速將管轉移到冰上3分鐘。注意該過程不要搖動離心管。
4. 向離心管中加入900 μl 無菌LB 培養基(不含抗生素),混勻后置于37℃搖床振蕩培養1 小時(160-220 轉/分鐘)。 該步驟的目的是使質粒上相關的抗性標記基因表達,使菌體復蘇。
5. 將已轉化的感受態細胞低速離心(5000 rpm, 4分鐘)后棄掉部分上清,保留100-150μl培養基,用移液器輕輕吹打懸浮菌體后,全部加到含相應抗生素的LB 固體瓊脂培養基上,或含X-gal、IPTG及相應抗生素的LB瓊脂平板表面,用無菌彎頭玻棒鋪菌器將細胞均勻涂開。
如果預計的單克隆數量較多,可省略離心步驟,直接取200-300μl轉化產物涂布平板(過多的菌液涂布可能會使單克隆菌落粘連在一起,難以挑取)。涂布后剩余的菌液可置于4℃保存,如果次日的轉化菌落數過少可以將剩下的菌液再涂布至新的平板上。
 6. 將平板置于室溫直至液體被吸收,倒置平板,37℃培養12-16 小時可出現單菌落或藍白斑。  簡易操作步驟 此步驟不適用某些抗生素抗性的質粒(比如卡那霉素抗性),若出現轉化異常,請用常規步驟操作。

簡易操作步驟
此步驟不適用某些抗生素抗性的質粒(比如卡那霉素抗性),若出現轉化異常,請用常規 步驟操作。
1. 將選擇性固體培養基放于培養箱中預熱至 37℃。
2. 從-70℃冰箱中取出感受態細胞置于冰上融化,如需分裝可將剛融化的細胞懸液分裝到無菌預冷的離心管中,在置于冰浴中。
3.向感受態細胞懸液中加入目的 DNA(1-10 ng,且體積<10 ?l),輕輕旋轉離 心管以混勻內容物,冰浴3-5分鐘。
轉化效率與外源DNA的濃度在一定范圍內成正比,但當加入的外源DNA量過多或體積過大時反而會降低轉化效率。轉化時DNA體積要小于感受態細胞體積的十分之一。  
4. 取已轉化的感受態細胞直接涂布到預熱至37℃含相應抗生素的LB固體瓊脂培養基上,或含X-gal、IPTG及相應抗生素的LB瓊脂平板表面,用無菌彎頭玻棒鋪菌器將細胞均勻涂開。
5. 將平板置于室溫直至液體被吸收,倒置平板,37℃培養12-16 小時可出現單菌落或藍白斑。

 
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